活體轉染是指可以直接應用于動物體的轉染方法。Mirus的活體核酸遞送(轉染)實驗試劑專門為小鼠設計，可以將核酸安全高效地注入活體實驗室小鼠，可用于基因敲除研究中siRNA的傳遞或肝臟中的基因表達研究的DNA傳遞。

TransIT®-QR Delivery Solution    MIR 5240

特點：

裸核酸傳遞-與聚賴氨酸和PEI方法相比，實現更高水平的基因表達。 

多功能平臺-用于DNA或siRNA傳遞，使用流體動力尾靜脈注射進小鼠體內。 

超低細胞毒性:與生理鹽水注射相比，心臟輸出量損失最小，可在注射后(幾分鐘內)迅速恢復。 

TransIT-QR Delivery Solution將Label ITCy3 RNAi Delivery Control運送到肝細胞。使用TransIT-QR Delivery Solution通過尾靜脈流體動力學將25µg Label ITCy3 RNAi Delivery Control(紅色)運送給小鼠。注射45分鐘后取肝切片固定，復染細胞核(藍色)和肌動蛋白(綠色)。

與使用生理鹽水注射相比，TransIT-QR溶液最大限度地減少心輸出量的損失。將小鼠麻醉后與動脈血壓計相連，通過使用流體動力尾靜脈注射系統注射TransIT-QR遞送溶液（紅色）或生理鹽水（藍色）至小鼠體內。以心率乘以脈壓（收縮壓和舒張壓之間的差）來估計相對心輸出量，并與注射前心輸出量進行對比。

“增強表達”的體內遞送試劑-TransIT-EE Delivery Solution  MIR 5340 

特點：

裸核酸傳遞-與TransIT- QR遞送試劑、TransIT- In Vivo基因傳遞系統、聚賴氨酸和PEI方法相比，實現更高的基因表達水平。
多功能平臺-適合使用流體動力尾靜脈注射到小鼠中進行DNA傳遞。

TransIT-EE試劑可增強肝臟中熒光素酶的表達。使用TransIT-QR或TransIT-EE遞送試劑10 μg熒光素酶表達載體通過流體動力傳遞尾靜脈注射系統運送給小鼠。注射24小時后收集肝臟并測定熒光素酶活性。 

TransIT-EE溶液可增強多種器官中熒光素酶的表達。使用TransIT-QR或TransIT-EE遞送液，采用流體動力尾靜脈注射系統將10µg pCI-Luc (CMV啟動子驅動熒光素酶表達載體)運送至小鼠。注射24小時后收集器官并測定熒光素酶活性。

實驗室小鼠肝臟中實現長期表達的載體系統

特點：

持續的基因表達-注射后8個月，小鼠肝臟實現長期的肝臟基因表達

通用平臺-可用于表達LacZ或SEAP的陽性對照載體

pLIVE載體中的啟動子在肝臟長期表達方面優于CMV啟動子。pLIVE-SEAP載體(20 μg)和pCMV-SEAP (10 μg, CMV啟動子驅動的SEAP載體)分別通過水動力尾靜脈注射系統和TransIT-QR水動力運送液(MIR 5240)給4只ICR小鼠。 在注射后的指/定天數，收集每只小鼠的血清，使用Phospha-Light™SEAP測定試劑盒(Applied Biosystems)測定SEAP活性水平。比較每組的平均SEAP活性。

水動力尾靜脈注射pLIVE-lacZ載體后ß-半乳糖苷酶在肝臟的強表達。 pLIVE-lacZ載體(圖A)通過流體動力尾靜脈注射系統和TransIT-QR流體動力運送溶液(MIR 5240)被輸送到ICR小鼠體內。注射24小時后，取肝臟切片，X-gal染色，檢測ß-半乳糖苷酶活性(藍色細胞)。 然后用蘇木精和伊紅Y復染細胞，分別染色細胞核和細胞質。 圖B中的對照組小鼠(lacZ陰性)與圖A平行染色，未發現ß-半乳糖苷酶活性。 

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